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文章來源：procell
外泌體作為細胞間通訊的重要介質，其高純度、高回收率的分離對下游功能分析、組學檢測及疾病診斷至關重要。然而，傳統(tǒng)外泌體提取方法往往面臨設備要求高、操作流程復雜等挑戰(zhàn)。為此，普諾賽®針對性開發(fā)了多種分離方案，以滿足不同樣品類型與研究需求。
在上期細胞學堂中，我們梳理了常用的外泌體分離方法，本期我們將進一步聚焦普諾賽®推出的四款外泌體分離試劑盒，詳細解析其核心原理、操作流程、注意事項及優(yōu)勢，助力您挑選最-適合的產(chǎn)品。
微量外泌體分離試劑盒（磁珠法）
貨號：
P-CA-501
試劑盒組分：
Exosome Beads、
Solution A、
Elution Buffer
原理概述
利用自主研發(fā)的均相液體磁珠（Exosome Beads），通過磁珠特異性結合外泌體而不吸附雜質，以及磁性分離技術，達到高純度和高回收率的分離效果。
操作流程
1
樣品預處理：差速離心（300 g，5 min→2000 g，10 min→14000 g，30 min）逐步去除樣品中細胞、細胞碎片及大體積顆粒；
2
富集外泌體：向去除了保護液的磁珠中加入預處理后的樣品，置于搖床室溫旋轉孵育30 min；
3
洗滌：置于磁力架上，靜置30s，棄上清，并用Solution A洗滌，重復2次，保留磁珠；
4
分離外泌體：加入Elution Buffer后置于搖床室溫旋轉孵育30 min；置于磁力架上，靜置30s，轉移上清到新的離心管中，該上清即為分離的外泌體。
注意事項
在某些樣品中，磁珠結合外泌體時可能會結團，但不影響分離效果，無需處理；
完成分離后的外泌體不宜長時間在Elution Buffer中保存。若長時間保存，可使用超濾管將溶液置換為PBS。
優(yōu)勢
分離的外泌體純度高且完整性好，適合分離微量或珍貴樣品中外泌體；分離操作簡便，僅需常規(guī)磁力架，無需特殊設備，高通量，能同時處理多個樣本，兼容自動化操作。
通用外泌體分離試劑盒（SEC法）
貨號：
P-CA-502/P-CA-503
試劑盒組分：
Exosome Purification Column、
Column Adapter
注：P-CA-502和P-CA-503僅產(chǎn)品規(guī)格和樣品上樣量有區(qū)別，其他操作是一致的。
原理概述
基于分子排阻色譜原理，利用外泌體純化柱（Exosome Purification Column）中的多孔凝膠顆粒作為填料，這些填料顆粒根據(jù)顆粒大小形成不同的孔道，使得在PBS緩沖液流動的過程中，將樣品中外泌體與其他不同尺寸的顆粒進行分離。
操作流程
1
樣品預處理：差速離心（300 g，5 min→2000 g，10 min→14000 g，30 min）逐步去除樣品中細胞、細胞碎片及大體積顆粒；
2
純化柱預處理：將純化柱在室溫平衡30 min，檢查并排除空氣，PBS平衡純化柱；
3
外泌體分離：待樣品完-全進入純化柱，分批加入0.5 mL PBS，并收集流穿液，其中4-8號管（P-CA-502）或8-12號管（P-CA-503）中收集的流穿液即為分離的外泌體；
4
純化柱維護：先后加入PBS和20%乙醇清洗純化柱，再將純化柱加滿20%乙醇密封，于4℃保存。
注意事項
本操作中使用的PBS和20%乙醇建議現(xiàn)配現(xiàn)用，同時經(jīng)0.2 μm濾膜過濾、超聲或真空脫氣，避免造成純化柱出現(xiàn)大量氣泡，影響分離效果；
純化柱使用前需充分平衡至室溫（18-25℃），溫度過低或過高，都會影響外泌體分離效果；
純化柱中間不能有氣泡，使用前后需認真檢查，避免影響外泌體分離效果；
純化柱可以反復利用，但多次使用會影響純化效果，建議重復使用不超過5次；
當分離的外泌體進行NGS或者其他組學分析時，為避免交叉污染，建議每個樣品使用一支新的純化柱。
優(yōu)勢
分離的外泌體純度高、回收率高；操作簡單，無需專業(yè)的純化設備，可獲得無蛋白污染、用于鑒定檢測和功能研究的高質量外泌體。
離心柱式外泌體分離試劑盒
貨號：
P-CA-504
試劑盒組分：
Spin Column 01、
Collection Tubes (2 mL)、
Solution A
原理概述
離心柱中裝填的介質能無差別吸附雜質而不結合外泌體，利用離心力實現(xiàn)樣品中外泌體與雜質的分離。此法不僅可快速分離外泌體，還可去除游離的外泌體標記染料。
操作流程
1
樣品預處理：差速離心（300 g，5 min→2000 g，10 min→14000 g，30 min）逐步去除樣品中細胞、細胞碎片及大體積顆粒；
2
離心柱預處理：棄去離心柱（Spin Column 01）上層的保護液體，加入Solution A離心洗滌；
3
外泌體分離：將預處理后的樣品加入離心柱中，離心獲得的洗脫液即為分離的外泌體。
注意事項
單個離心柱最大上樣體積為500 μL，若樣品體積超過500 μL，則建議試用50 kDa超濾管濃縮樣品至0.5 mL，注意濃縮體積不超過20倍；
對高粘度樣品，如血漿、血清、胸腹水等樣本，可用等體積去離子水稀釋再加入到離心柱中；
對雜質較多的樣品，如血漿、血清、胸腹水、牛奶等樣本，建議用PBS稀釋10倍后，經(jīng)過50 kDa超濾管濃縮10倍；然后加入剩余液體10倍體積的PBS，超濾濃縮10倍后，再用離心柱分離外泌體；
離心法分離時，控制離心力在300-500×g；若樣品粘度大，可適當增加離心力，以確保分離效果。
優(yōu)勢
外泌體分離操作簡便、高純度和高富集量，無需磁力架、超速離心機等特殊設備；能去除游離的外泌體標記染料。
外泌體分離試劑盒（沉淀法）
貨號：
P-CA-505
試劑盒組分：
Exosome Precipitation Solution、
Solution A
原理概述
通過添加特定的試劑（如Exosome Precipitation Solution），使樣品中的外泌體迅速聚集沉降，再通過離心收集沉淀中的外泌體。
操作流程
1
樣品預處理：差速離心（300 g，5 min→2000 g，10 min→14000 g，30 min）逐步去除樣品中細胞、細胞碎片及大體積顆粒；
2
沉淀外泌體：血清/血漿樣品按照樣品:Solution A:Exosome Precipitation Solution=2:2:1的體積比混勻；細胞培養(yǎng)上清/尿液樣品按照樣品:Exosome Precipitation Solution=4:1的體積比混勻；室溫孵育30 min或4℃孵育過夜；
3
外泌體回收：高速離心，吸棄上清，向沉淀中加入Solution A重懸沉淀，再次離心收集上清，即為分離的外泌體。
注意事項
注意樣品與各試劑的體積比，嚴格按照推薦比例操作；
細胞培養(yǎng)上清或尿液樣品體積過大，可以先進行濃縮再進行沉淀；
操作要輕柔，吸棄上清時避免吸到沉淀影響外泌體得率；
實驗時間允許情況下，為保證外泌體分離的高回收率，推薦4℃孵育過夜。
優(yōu)勢
適用樣品廣，外泌體回收率高、重復性好；無需特殊設備，操作簡便快速，能同時處理多個樣本。
希望這篇關于外泌體分離試劑盒的選用指南能幫助到您！更多細胞培養(yǎng)相關干貨，請持續(xù)關注細胞學堂專欄~
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